<NW3231> 水溶性外泌体荧光标记染料(Aco-490,青色)

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<NW3231> 水溶性外泌体荧光标记染料(Aco-490,青色)

水溶性外泌体荧光标记染料(Aco-490,青色)
Water-soluble Fluorescent Dye (Aco-490, cyan)
货号:NW3231
规格:25T
品牌:NoninBio
价格: 4000.00
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25T

 

水溶性外泌体荧光标记染料(Aco-490,青色)

Water-soluble Fluorescent Dye (Aco-490, cyan)

 

产品编号

产品名称

包装规格

NW3231

水溶性外泌体荧光标记染料(Aco-490,青色)

25T

  【温馨提示】:见我司整理的专注外泌体研究,外泌体提取专家,专注外泌体提取试剂盒产品专题。


产品简介:

Acoerela Aco-490 属于水溶性、跨膜的共轭寡电解质(COEs)。这类亲脂性染料具备独特性能,能够完全嵌入目标膜的脂质双层,从根源上最大程度减少染料从目标中“泄漏”的情况发生。

在荧光特性方面,Aco-490 只有在与目标膜结合时,才会呈现出显著的荧光增强效果。同时,Aco-490 具有极高的水溶性,溶解在水性缓冲液时,既不会形成胶束,也不会产生纳米颗粒。这一特性使其在纳米流式分析以及细胞摄取实验中,能够有效规避假阳性结果的出现,确保实验数据的准确性与可靠性。

 

产品参数:

溶剂:水性缓冲液(PBS Opti-MEM

推荐激光器:405 nm(紫光)

发射峰范围:458508 nm

常用检测通道:BV421/DAPI/Pacific Blue

 

保存条件

2-8℃避光保存,2年有效。

 

产品组成:

名称

规格

Aco-490 染料

25 T

 

产品使用:

一、染料工作液制备

1.      取染料管,加入25μL水性缓冲液(推荐使用PBSOpti-MEM溶解),配置成浓度为 25μM的储存液;

2.      使用涡旋振荡器充分振荡1min 至染料完全溶解;

3.      40°C水浴15min(如有超声设备,可同步开启超声辅助溶解);

4.      取洁净EP管,对储存液进行分装;

5.      取适量储存液,用缓冲液稀释至10μM的工作浓度。

 

二、外泌体染色

1.      将纯化的细胞外囊泡(EVs)浓度调整至1011 Particles/mL

2.      按表1构建染色孵育体系:

1. Aco-490标记外泌体(EV)的样本制备50μL体系

样品

染料终浓度μM

10μM工作液体积μL

PBS体积μL

1011/mL EV体积μL

EV+Aco-490

1

5

45

EV

5

45

仅染料

1

5

45

3.      加入染料工作液后,盖紧离心管盖,用枪头轻柔吹吸混匀,放置于37℃环境,避光孵育2小时。

 

三、去除游离染料

1.      染色完成后,在样品中加入2倍体积的PBS,使用100 KDa超滤管*,以3000 ×g的离心力离心 5~10min,进行超滤置换,去除溶液中游离的染料,将上室样品浓缩至原体积;

2.      重复上述超滤置换步骤 2 次;

*注:完成本次实验后,请丢弃超滤管,切勿留作下次实验重复使用。

3.      收集超滤管上室的样本,即为染色后的外泌体;

4.      染色后的外泌体建议尽快使用,若在2周内使用,可置于 4℃ 环境中避光保存;如需长期保存,可置于-80℃冷冻保存,保存时间过长可能影响下游实验效果。

 

四、细胞摄取

1.      提前24小时铺种目标细胞;

2.      用不含外泌体的细胞培养基将染色样本稀释5~10 倍,使染色EV浓度调整为约 5E+09Particles/mL(超滤后外泌体得率约为20%);

3.      吸除待处理细胞原有的培养基;

4.      加入含染色EV的新鲜培养基,在细胞培养箱避光孵育24 小时;

5.      孵育24小时后,弃去含有染料的孵育液,用PBS 清洗细胞3次;

6.      根据实验需求选择成像观察方式,可直接进行活体成像, 也可固定细胞后成像观察;

7.      若选择固定细胞后成像,使用细胞固定剂在室温下固定15 min(固定后观察细胞形态是否发生变化,部分固定液渗透压不稳定,可能导致细胞变形);

8.      弃去固定剂,用PBS清洗细胞3次,每次5min

9.      使用含DAPI的封片剂进行封片(或先用DAPI进行核染10 minPBS清洗3次,每次5min,之后进行封片);

10.  共聚焦成像: Aco-490的荧光信号可使用405 nm激光器激发,发射波长从458508nm收集,常用通道为 DAPI / BV421

11.  由于 Aco-490 DAPI激发光相同且发射光谱部分重叠,建议采用顺序扫描:先收集Aco-490信号,再收集其他通道信号(如 FITC/PE),避免光谱串扰。

 

注意事项:

1.      荧光染料均存在淬灭问题,请注意全程避光,以减缓荧光淬灭。

2.      染料工作液应现配现用,不能提前配制,否则将影响染色效果。

3.      Aco-490染色固定细胞时,样品宜使用4%多聚甲醛进行固定,使用其它不适当的固定液会导致荧光背景较高。

4.      关于外泌体染色后去除游离染料:外泌体染色步骤中去除游离染料的步骤必不可少,以避免游离染料对后期实验的干扰。为保证超滤后有足够的外泌体回收量,建议用于染料标记的外泌体原始浓度达到 10¹¹ Particles/mL

5.      染料标记外泌体与细胞共孵育条件:染料标记外泌体与细胞共孵育的培养条件尽可能使用无血清培养基,以提高细胞对染料标记外泌体的摄取效率,共孵育参考时长为 24 小时。

6.      Aco-490能否与抗体共染? 可以。推荐顺序:先加 Aco-490 37°C染色 1 小时, 再加抗体室温孵育 1 小时。

7.      Aco-490 能否与 DAPI 共染? 可以。Aco-490 的发射范围(458–508 nm)与 DAPI 的发射范围(~460 nm)有部分重叠,共聚焦成像时建议顺序扫描,纳米流式检测时设置合适补偿。

8.      Aco-490 CytoFLEX nano上为什么用B531 通道更好? 由于 CytoFLEX nano 的共线激光设计,Aco-490 信号会出现在B531通道(蓝光通道)而非预期的V447通道。在 CytoFLEX LX/S 等空间分离激光的仪器上,则会正常出现在紫光通道。

9.      为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。


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