植物基因组DNA提取试剂盒(离心柱法)
产品线 | 产品目录名称 | 规格 | 货号 | 目录价 |
核酸提取纯化 | 植物基因组DNA提取试剂盒(离心柱法) | 50 T | BK0013-01 | 300 |
产品介绍
本试剂盒采用DNA吸附柱和新型独特的缓冲液系统,适用于从含酚类、多糖类和酶抑制物的植物样本中快速简单地提取基因组DNA。离心吸附 柱中采用的硅基质材料为新型材料,高效、专一吸附DNA,可有效去除杂质蛋白。提取过程不需要用到有毒的酚氯仿等有毒化学品,提取的基因 组DNA完整性好,纯度高,质量稳定可靠。纯化的DNA可直接用于酶切、PCR、文库构建、Sourthern杂交等实验。
试剂名称 | 50 T |
裂解液 PA | 18 ml |
裂解液 PB | 3 ml |
沉淀缓冲液 | 7 ml |
洗涤液 I | 18 ml |
洗涤液 II | 18 ml |
洗脱液 | 5 ml |
吸附柱 AP20 | 50 个 |
收集管 | 50 个 |
DTT | 1 ml |
RNase (20 mg/ml) | 2 ml |
注意事项
1 使用前检查各组分是否出现沉淀。若有,请轻轻摇晃混合均匀,或37℃水浴重新溶解。
2 使用前请将DTT全部加入到裂解液 PA中去,并置于4℃保存,保质期6个月。
3 RNase(20mg/ml) 请置于-20℃保存。
4 沉淀缓冲液使用前请放置冰上预冷。
5 洗涤液I和洗涤液II使用前请按标签提示加入无水乙醇,混合均匀,并在瓶子上做好标记。
6结合液为异丙醇,请自备。
使用流程
样本预处理
1 称取新鲜植物组织样本100mg或干重组织约30mg(种子样本建议起始用量10 mg),加入液氮,充分研磨成粉末。
2 迅速将研磨好的样本加入预先装有350 μl裂解液 PA的离心管中(请先检查是否加入DTT),用枪头吹打混匀后,依次加入40 μl RNase (20mg/ml) 、50 μl裂解液PB,涡旋混匀,65℃孵育10-30 min。
3 向上一步离心管中加入130 μl沉淀缓冲液,震荡混匀,直至出现沉淀。
4 12,000 rpm(~13,400×g),离心5min,小心将全部上清转移到新的离心管中。
DNA提取
1 向样本预处理步骤4的离心管中加入与上清等体积的异丙醇,混匀,全部转移到吸附柱AP20中(吸附柱放入收集管中),12,000rpm(~13,400×g)离 心1 min,倒掉收集管中的废液,将吸附柱AP20重新放入收集管中。
2 向吸附柱AP20中加入600μl洗涤液 I(请先检查是否加入无水乙醇),12,000rpm(~13,400×g)离心1min,倒掉收集管中的废液,将吸附柱AP20重新放入收集管中。
3 向吸附柱AP20中加入600μl 洗涤液 II(请先检查是否加入无水乙醇),12,000rpm(~13,400×g)离心1min,倒掉收集管中的废液,将吸附柱AP 20放入收集管中。
4 重复操作步骤3。
5 将吸附柱AP20放入收集管中,12,000rpm(~13,400×g)离心2min,目的是将吸附柱中残余的洗涤液 II去除,将吸附柱AP20置于室 温放置数分钟,彻底晾干,以防止洗涤液 II中残留的乙醇影响下一步实验。
6 将吸附柱AP20置于一个干净的离心管中,向吸附柱膜的中间部位滴加50-100μl洗脱液,室温放置2min,12,000rpm(~13,400×g)离 心2min将产物收集到离心管中,即为植物基因组DNA,如不立即进行下游实验,于-20℃保存备用。